¿Por qué utilizar bacterias EM para ajustar el agua para criar camarones y cuáles son los beneficios?
Lo más importante en la acuicultura es la calidad del agua. La calidad del agua también afecta la calidad del cultivo de camarón. Cómo controlar la buena calidad del agua y cómo ajustarla requiere experiencia técnica. también productos que pueden mejorar la calidad del agua, permitiéndonos mejorarla en todo momento y evitar que la calidad del agua se deteriore y otros problemas. Al igual que complementar el calcio para la deficiencia de calcio o complementar el zinc para la deficiencia de zinc, lo que nos falta es lo que usamos para complementarlo. Las bacterias EM acuáticas son como suplementos dietéticos, que lentamente reponen y mejoran los posibles problemas que puedan surgir en la calidad del agua, como turbidez, crecimiento de algas y otros problemas obvios.
Al igual que los complementos alimenticios, no hay efectos secundarios de la medicación habitual. Al mismo tiempo, puedes controlarlo en tiempo real y complementar las partes faltantes. Sin embargo, el efecto es más duradero en comparación. medicina, el ajuste será más lento, pero el efecto es de hecho a largo plazo y factible.
En vista de los problemas de bajo rendimiento y enfermedades en el cultivo de Penaeus vannamei en los últimos años, se utilizó líquido bacteriano EM para tratar todo el proceso de cultivo de Penaeus vannamei en los antiguos estanques de camarón. que naturalmente reciben agua de marea, la calidad del agua de los estanques en el grupo de prueba fue estable, se cultivaron 52 camarones comerciales de gran tamaño en 85 días, con un rendimiento de 227 kilogramos por mu, un aumento neto de 89 kilogramos por mu en comparación. al grupo de control (138 kilogramos). Se puede ver que la tecnología de bacterias EM es de hecho una tecnología de reproducción eficaz y fácil de operar para Penaeus vannamei.
(1) Tratamiento experimental
El experimento se divide en un grupo experimental y un grupo de control. El área del grupo experimental es de 7,5 acres y el área de. el grupo de control tiene 12 acres. Ambos utilizan el método antiguo de absorber naturalmente el agua de las mareas. Cada estanque de camarones estaba equipado con dos aireadores. Durante la prueba, la temperatura del agua era de 24-32 °C y la salinidad del agua de mar era de 10 ‰. 22‰. Ambos grupos fueron sembrados con 13.000 plántulas de camarón por mu.
① Tratamiento de limpieza del estanque: el grupo experimental primero eliminó peces y camarones silvestres de acuerdo con métodos convencionales y trató el fondo del estanque con una solución bacteriana EM 2 semanas antes de la siembra. Método específico: Drene el agua del estanque al nivel más bajo posible, pero el fondo del estanque debe mantenerse húmedo. Espolvoree 2,5 kilogramos de líquido bacteriano EM por acre en el fondo del estanque, primero rocíe la mitad y luego vierta. la otra mitad después de arar, después de unas semanas, se vierte agua en el estanque y, al mismo tiempo, se vierte 1 kilogramo de líquido bacteriano por acre en el estanque, y luego se cultiva la calidad del agua de acuerdo con los métodos convencionales, y Las plántulas de camarón se liberan en el momento adecuado.
② Tratamiento de la calidad del agua: una vez liberados los camarones blancos, se rocía una solución bacteriana EM cada medio mes a una dosis de 1,5 kilogramos por acre. En el período posterior, la fumigación se extiende a una vez al mes. .
③ Tratamiento del alimento: rocíe el alimento directamente con bacterias EM Haowangnong antes de alimentarlo. La dosis es de 25 ml de solución de bacterias EM por kilogramo de alimento, una vez al día.
No se utilizan desinfectantes durante todo el proceso de cría. ***Cambie el agua dos veces y bombee agua dulce de vez en cuando para reponer el nivel del agua al nivel normal. En el grupo de control, los estanques se limpiaron y cultivaron según métodos convencionales. Durante el período experimental, se realizaron análisis de la calidad del agua y del sustrato tres veces: una vez antes de limpiar el estanque, una vez un mes después de que se colocaron las plántulas y una vez dos meses después de que se colocaron las plántulas.
(2) Resultados y análisis
① Oxígeno disuelto: Dado que tanto el grupo experimental como el grupo de control tienen aireadores, la diferencia en oxígeno disuelto no es significativa.
② Calidad del agua: el color del agua del grupo de prueba es amarillo verdoso, lo que refleja que las algas verdes representan la mayoría en el cuerpo de agua y pueden mantener una calidad estable del agua. En el grupo de control, el color del agua cambiaba, la masa de agua estaba severamente eutrófica y la calidad del agua era inestable.
③ Contenido de nitrógeno amoniacal: a partir de tres análisis de calidad del agua, el nitrógeno amoniacal en el grupo de prueba aumentó de 0,2 mg por litro a 0,6 mg por litro, lo que indica que el nivel de contaminación del agua no aumentó con el tiempo de reproducción. aumentó. El nitrógeno amoniacal en el grupo de control aumentó de 0,2 mg por litro a 0,8 mg por litro, e incluso alcanzó 1,2 mg por litro, lo que indica que la contaminación del agua se volvió cada vez más grave con la extensión del tiempo de reproducción.
④ Demanda bioquímica de oxígeno: la demanda bioquímica de oxígeno del grupo de prueba fue menor que la del grupo de control y disminuyó gradualmente con la extensión del tiempo de reproducción, mientras que la demanda bioquímica de oxígeno del grupo de control aumentó significativamente; , indicando cada vez más contaminación del agua.
⑤ Contenido de sulfuro de hidrógeno: la contaminación por sulfuro de hidrógeno en el grupo de prueba (0,08 mg/L) fue menor que en el grupo de control (0,25 mg/L). Con la extensión del tiempo de reproducción, el aumento. La contaminación por sulfuro de hidrógeno en el grupo de prueba no fue obvia.
⑥ Análisis del sustrato: desde una perspectiva sensorial, en comparación con el grupo de control, el área ennegrecida del grupo experimental fue significativamente mayor que la del grupo de control, y con la extensión del tiempo de reproducción, el olor a sulfuro de hidrógeno se hizo gradualmente más fuerte; y el grupo de prueba tenía un aroma de fermentación, que puede deberse a la fermentación de cebo residual orgánico, estiércol de camarón, etc. en el sustrato por bacterias EM.
⑦ Tasa de supervivencia y rendimiento: en la última etapa del grupo de control, la calidad del agua estaba gravemente contaminada, estalló la enfermedad de la mancha blanca y aparecieron camarones muertos uno tras otro para reducir las pérdidas. La cosecha se inició el 25 de septiembre y solo se cultivaron durante 70 días, con calibres menores, 76 colas por kilogramo. La tasa de supervivencia del grupo experimental fue del 79%, mayor que la del grupo de control. Durante el período de reproducción, la calidad del agua fue estable y nunca se había producido ninguna enfermedad. Pudo crecer en tamaños más grandes, 52 colas por kilogramo. , por lo que el rendimiento aumentó considerablemente y pudo alcanzar los 227 kilogramos por mu. En comparación con el grupo de control, el rendimiento aumentó en 89 kilogramos por mu (138 kilogramos por mu).
⑧ Coeficiente de alimentación: El coeficiente de alimentación del grupo de prueba fue 1,2, que fue inferior al 1,4 del grupo de control. Esto puede deberse a que las bacterias EM pueden mejorar la palatabilidad del alimento y mejorar la calidad de la proteína del alimento.
A través de las pruebas mencionadas anteriormente, es seguro que las bacterias EM pueden mejorar el sustrato y estabilizar la calidad del agua, y es una tecnología importante para garantizar el éxito del cultivo de vannamei. Cuando se utiliza líquido bacteriano EM en el cultivo de Penaeus vannamei, las tres medidas de tratamiento del fondo del estanque, tratamiento de la calidad del agua y tratamiento del alimento deben combinarse para desempeñar un papel más eficaz.