¿En qué episodio el Paw Paw Team pide dulces para Halloween?
La línea de dulces de Halloween es el primer episodio.
"Paw Paw Team Makes a Difference" es una serie de televisión animada estadounidense que cuenta la historia de Ryder, un niño de 10 años entusiasta y competente en tecnología, que lidera una patrulla canina para proteger a un ciudad costera llamada Adventure Bay.
La obra fue producida por Nickelodeon en Estados Unidos y dirigida por Jamie Whitney. Se estrenó el 65438 de agosto de 2003.
上篇: Materiales y métodos del cangrejo crudo en escabeche de Zhejiang. ¿Cómo hacer cangrejo crudo en escabeche de Zhejiang? 下篇: Pasos estándar para buscar ayuda con el "método de conteo en placa"1 Método de operación: tomar 25 g (o 25 ml) de la muestra de prueba de forma aséptica y colocarla en 225 ml de solución salina fisiológica esterilizada u otro diluyente. (Coloque una cantidad adecuada de perlas de vidrio en la botella en una botella de vidrio esterilizada o en un mortero esterilizado, agite o muela bien para obtener una dilución uniforme de 1:10. Después de agregar el diluyente, es mejor colocar la muestra sólida en un homogeneizador de esterilización y procesarla a una velocidad de 8000~10000 r/min durante 1 minuto para obtener una dilución uniforme de 1:10. Utilice una pipeta estéril de 1 ml para absorber la dilución 1:10, inyéctela lentamente a lo largo de la pared del tubo en un tubo de ensayo que contenga 9 ml de solución salina esterilizada u otros diluyentes, agite el tubo de ensayo para mezclar y haga una dilución 1:100. Tome otra pajita estéril de 1 ml y realice una dilución incremental de 10 veces según la secuencia de operación anterior, de modo que se utilice una pajita estéril para cada dilución incremental. 2. Operación aséptica: Se debe aplicar el concepto de "operación aséptica" durante la cirugía. El material de vidrio utilizado debe estar completamente esterilizado y no pueden quedar bacterias ni sustancias antibacterianas. También se deben esterilizar los instrumentos utilizados como tijeras y pinzas. Si la muestra está empaquetada, limpie la apertura del paquete con etanol al 75% y luego tome la muestra. Las operaciones deben realizarse en un banco de trabajo limpio y desinfectado o en una habitación estéril. Las placas de agar se exponen en la mesa de trabajo durante 15 minutos, con no más de 15 colonias por placa. 3. Representatividad del muestreo: Si se trata de una muestra sólida, no se debe concentrar el muestreo, sino tomar algunas muestras más. Las muestras sólidas deben homogeneizarse o molerse y las muestras líquidas deben agitarse para obtener un diluyente uniforme. 4. Error de dilución de la muestra: para reducir el error de dilución de la muestra, cada dilución debe agitarse completamente para que sea uniforme durante el proceso de dilución en serie y se debe reemplazar la pipeta para cada dilución. Al realizar diluciones en serie, el líquido de la pipeta debe fluir a lo largo de la pared de la pipeta y la punta de la pipeta no debe extenderse hacia el diluyente para evitar que la solución adherida al exterior de la pipeta se disuelva en él. Para reducir los errores de dilución, tome 10 ml de solución de dilución para el estándar SN e inyéctelos en 90 ml de solución tampón. 5. Diluyente: el diluyente de la muestra es principalmente solución salina fisiológica esterilizada, y algunos usan tampón fosfato (o agua con peptona al 0,1%), que tiene un cierto efecto protector sobre las células bacterianas dañadas en los alimentos. Se puede utilizar agua destilada esterilizada para diluir alimentos con alto contenido de sal (como la salsa de soja). 1. Método de operación: De acuerdo con los requisitos estándar o la estimación de la situación de contaminación, seleccione de 2 a 3 diluciones apropiadas respectivamente y realice una dilución incremental de 10 veces al mismo tiempo. Transfiera 1 ml del diluyente a una pajita esterilizada que absorba. los platos del diluyente, haciendo dos platos para cada dilución. Vierta el medio de agar nutritivo enfriado a 46 °C en una placa de Petri de aproximadamente 65438 ± 05 ml, gire la placa de Petri y mezcle uniformemente. Al mismo tiempo, vierta el medio de agar nutritivo en una placa estéril y agregue 1 ml de diluyente (sin muestra) como control en blanco. Después de que el agar se solidifique, dé la vuelta a la placa y colóquela en una incubadora a 36±65438±0°C durante 48±2 horas. Saque y cuente el número de colonias en la placa, multiplíquelo por el factor de dilución para obtener el número. de colonias contenidas en cada gramo (ml) de muestra total. 2. El medio de cultivo utilizado para la perfusión debe incubarse en un baño de agua a 46°C. Si la temperatura es demasiado alta, afectará el crecimiento de bacterias. Si la temperatura es demasiado baja, el agar se condensará fácilmente y no podrá mezclarse completamente con el líquido bacteriano. Si no tienes baño maría, es mejor sentir el calor que usarlo en la piel. La cantidad de medio de vertido varía, oscilando entre 12 y 20 ml, siendo generalmente apropiados 15 ml. Una tabla demasiado gruesa afectará la observación y una tabla demasiado delgada se secará fácilmente. Al verter, si hay sedimento en el fondo del medio de cultivo, se debe desechar el fondo para evitar confusión con colonias bacterianas y afectar las observaciones del conteo. 3. Para que las colonias en la placa se distribuyan uniformemente, después de agregar la solución de prueba en la placa, vierta el medio de cultivo lo antes posible y gírelo para mezclar uniformemente. Puede girar hacia adelante y hacia atrás. El tiempo necesario para diluir la muestra de prueba en la placa final no debe exceder los 20 minutos para evitar la muerte o proliferación bacteriana. . 4. La temperatura de reproducción es generalmente de 37°C (la temperatura de reproducción de los productos acuáticos es generalmente de 30°C debido a la baja temperatura del agua en su entorno de vida). El tiempo de cultivo es generalmente de 48 horas y algunos métodos solo requieren 24 horas de cultivo para contar. La incubadora debe mantener una cierta humedad. Después de 48 horas de incubación en la placa de agar, la pérdida de peso del medio de cultivo no debe exceder el 65438±05%. 5. Para evitar confusión entre pequeñas partículas de los alimentos o impurezas del medio de cultivo y colonias bacterianas difíciles de distinguir. Al mismo tiempo, el diluyente y el medio agar se pueden mezclar para formar una placa plana y colocarse en un ambiente a 4°C sin cultivo, para realizar una observación de control durante el recuento. En algunos casos, para evitar que las partículas de alimentos se confundan con colonias bacterianas, se puede agregar cloruro de trifeniltetrazolio (TTC) al agar nutritivo. Después del cultivo, las colonias se volverán rojas y serán fáciles de separar. 1. Método de operación: Transcurrido el tiempo de incubación, contar el número de colonias en cada placa.